Amidofosforribosiltransferase

Amidofosforribosiltransferase
Indicadores
Número EC 2.4.2.14
Número CAS 9031-82-7--
Bases de dados
IntEnz IntEnz
BRENDA BRENDA
ExPASy NiceZyme
KEGG KEGG
MetaCyc via metabólica
PRIAM PRIAM
Estruturas PDB RCSB PDB PDBe PDBj PDBsum
Gene Ontology AmiGO / EGO

Amidofosforribosiltransferase (ATase), também conhecida como glutamina fosforribosilpirofosfato amidotransferase (GPAT), é uma enzima responsável por catalisar a conversão de 5-fosforribosil-1-pirofosfato (PRPP) em 5-fosforribosil-1-amina (PRA), usando o grupo amina de uma cadeia lateral glutamina. Este é o passo envolvido na síntese de novo purina. Em humanos é codificado pelo gene PPAT (fosforribosil pirofosfato amidotransferase).[1][2] ATase é um membro da família purina/pirimidina fosforribosiltransferase.

Estrutura e função

A enzima consiste em dois domínios: um domínio de glutaminase que produz amônia a partir de glutamina por hidrólise e um domínio de fosforibosiltransferase que liga a amônia à ribose-5-fosfato.[3] A coordenação entre os dois sítios ativos da enzima confere uma complexidade especial.

O domínio glutaminase é homólogo a outras hidrolases de nucleófilo N-terminal (Ntn)[3] tais como carbamoil fosfato sintetase (CPSase). Nove resíduos invariáveis entre as sequências de todos as Ntn amidotransferases desempenham papéis catalíticos chave, ligação de substrato ou papéis estruturais. Um resíduo cisteína terminal atua como o nucleófilo na primeira parte da reação, análogo à cisteína de uma tríade catalítica.[3][4] O terminal N livre atua como base para ativar o nucleófilo e protonar o grupo de saída na reação hidrolítica, neste caso a amônia. Outro aspecto chave do sítio catalítico é um buraco de oxiânion que catalisa o intermediário da reação, como mostrado no mecanismo abaixo.[5]

O domínio PRTase é homóloga a muitas outras PRTases envolvidas na síntese de nucleotídeos de purina e rotas de salvamento (resgate). Todas as PRTases envolvidas o deslocamento do pirofosfato PRPP por uma variedade de nucleófilos.[6] ATase é a única PRTase que tem amônia como um nucleófilo.[3] Pirofosfato do PRPP é um excelente grupo lábil, portanto, pouca assistência química é necessária para promover a catálise. Em vez disso, a função primária da enzima parece ser reunir os reagentes adequadamente e prevenir a reação errada, como hidrólise.[3]

Além de terem suas respectivas habilidades catalíticas, os dois domínios também se coordenam para garantir que toda a amônia produzida a partir da glutamina seja transferida para PRPP e nenhum outro nucleófilo além da amônia que ataque PRPP. Isso é conseguido principalmente bloqueando a formação de amônia até que o PRPP seja ligado e canalizado a amônia para o sítio ativo da PRTase.[3]

Ativação inicial da enzima por PRPP é causada por uma mudança conformacional em um "laço de glutamina", que se reposiciona para ser capaz de aceitar a glutamina. Isso resulta em um aumento de 200 vezes do valor de Km para a ligação de glutamina[7] Uma vez que a glutamina se liga ao sítio ativo, outras mudanças conformacionais trazem o sítio para dentro da enzima, tornando-a inacessível. [3]

Essas mudanças conformacionais também resultam na formação de um canal de amônia de medida de 20 Å, uma das características mais marcantes desta enzima. Este canal não possui locais de ligação de hidrogênio, para garantir a fácil difusão da amônia de um local ativo para o outro. Este canal garante que a amônia liberada da glutamina atinja o sítio catalítico da PRTase, e difere do canal na CPSase[8] no qual é hidrofóbico em vez de polar, e transitório em vez de permanente.[3]

Mecanismo de reação

Arrow pushing mechanism for the reaction catalyzed by ATase.
Primeira metade do mecanismo catalítico da ATase ocorrendo no domínio da glutaminase sítio ativo. A cisteína catalítica realiza um ataque nucleofílico no substrato para formar um intermediário acil-enzima, que é resolvido por hidrólise. A amônia é produzida na terceira etapa, que é usada na segunda metade do mecanismo.
Arrow pushing mechanism for the reaction catalyzed by ATase.
Segunda metade do mecanismo catalítico da ATase ocorrendo no domínio da fosforribosiltransferase sítio ativo. A amônia liberada na primeira metade da reação substitui o pirofosfato no PRPP, produzindo fosforribosilamina. Um resíduo tirosina estabiliza o estado de transição e permite que a reação ocorra.

A reação global catalisada pela ATase é a seguinte:

PRPP + glutaminaPRA + glutamato + PPi

Dentro da enzima, a reação é dividida em duas semi-reações que ocorrem em diferentes sítios ativos:

1.

glutaminaNH3 + glutamato

2.

PRPP + NH3PRA + PPi

A primeira parte do mecanismo ocorre no sítio ativo do domínio glutaminase e libera um grupo amônia da glutamina por hidrólise. A amônia liberada pela primeira reação é então transferida para o sítio ativo do domínio fosforibosiltransferase via um canal de 20 Å, onde então se liga ao PRPP para formar PRA.

Regulação

Num exemplo de inibição de feedback, ATase é inibida principalmente pelos produtos finais da via de síntese de purinas, AMP, GMP, ADP e GDP.[3] Cada subunidade enzimática do homotetrâmero possui dois sítios de ligação para esses inibidores. O sítio alostérico (A) se sobrepõe ao sítio da ribose-5-fosfato de PRPP, enquanto o sítio catalítico (C) se sobrepõe ao sítio do pirofosfato de PRPP.[3] A ligação de pares de nucleotídeos específicos aos dois sítios resulta em inibição sinérgica mais forte do que a inibição aditiva.[3][9][10] A inibição ocorre por meio de uma mudança estrutural na enzima, onde a alça flexível de glutamina fica travada em uma posição aberta, impedindo a ligação de PRPP.[3]

Devido à labilidade química da PRA, que tem uma meia-vida de 38 segundos em pH 7,5 e 37 °C, pesquisadores sugeriram que o composto é canalizado de amidofosforribosiltransferase a GAR sintetase in vivo.[11]

Referências

  1. «Entrez Gene: phosphoribosyl pyrophosphate amidotransferase» 
  2. Brayton KA, Chen Z, Zhou G, Nagy PL, Gavalas A, Trent JM, Deaven LL, Dixon JE, Zalkin H (Fevereiro de 1994). «Two genes for de novo purine nucleotide synthesis on human chromosome 4 are closely linked and divergently transcribed». The Journal of Biological Chemistry. 269 (7): 5313–21. PMID 8106516. doi:10.1016/S0021-9258(17)37689-5 
  3. a b c d e f g h i j k l Smith JL (Dezembro de 1998). «Glutamine PRPP amidotransferase: snapshots of an enzyme in action». Current Opinion in Structural Biology. 8 (6): 686–94. PMID 9914248. doi:10.1016/s0959-440x(98)80087-0 
  4. Smith JL, Zaluzec EJ, Wery JP, Niu L, Switzer RL, Zalkin H, Satow Y (Junho de 1994). «Structure of the allosteric regulatory enzyme of purine biosynthesis». Science. 264 (5164): 1427–1433. Bibcode:1994Sci...264.1427S. PMID 8197456. doi:10.1126/science.8197456 
  5. «Overview for MACiE Entry M0214». EMBL-EBI 
  6. Music, WD (1981). «Structural features of the phosphoribosyltransferases and their relationship to the human deficiency disorders of purine and pyrimidine metabolism». CRC Critical Reviews in Biochemistry. 11 (1): 1–34. PMID 7030616. doi:10.3109/10409238109108698 
  7. Kim JH, Krahn JM, Tomchick DR, Smith JL, Zalkin H (Junho de 1996). «Structure and function of the glutamine phosphoribosylpyrophosphate amidotransferase glutamine site and communication with the phosphoribosylpyrophosphate site». The Journal of Biological Chemistry. 271 (26): 15549–15557. PMID 8663035. doi:10.1074/jbc.271.26.15549Acessível livremente 
  8. Thoden JB, Holden HM, Wesenberg G, Raushel FM, Rayment I (Maio de 1997). «Structure of carbamoyl phosphate synthetase: a journey of 96 A from substrate to product». Biochemistry. 36 (21): 6305–6316. CiteSeerX 10.1.1.512.5333Acessível livremente. PMID 9174345. doi:10.1021/bi970503q 
  9. Chen S, Tomchick DR, Wolle D, Hu P, Smith JL, Switzer RL, Zalkin H (Setembro de 1997). «Mechanism of the synergistic end-product regulation of Bacillus subtilis glutamine phosphoribosylpyrophosphate amidotransferase by nucleotides». Biochemistry. 36 (35): 10718–10726. PMID 9271502. doi:10.1021/bi9711893 
  10. Zhou G, Smith JL, Zalkin H (Março de 1994). «Binding of purine nucleotides to two regulatory sites results in synergistic feedback inhibition of glutamine 5-phosphoribosylpyrophosphate amidotransferase». The Journal of Biological Chemistry. 269 (9): 6784–6789. PMID 8120039. doi:10.1016/S0021-9258(17)37444-6Acessível livremente 
  11. Antle VD, Liu D, McKellar BR, Caperelli CA, Hua M, Vince R (1996). «Substrate specificity of glycinamide ribonucleotide synthetase from chicken liver». The Journal of Biological Chemistry. 271 (14): 8192–5. PMID 8626510. doi:10.1074/jbc.271.14.8192Acessível livremente 

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