Helisa pi (helisa π, helisa 4.416[1]) – rodzaj struktury drugorzędowej występujący w białkach i peptydach. Została zaproponowana na początku lat 50. XX wieku[2][3]. Charakteryzuje się występowaniem wiązań wodorowych pomiędzy resztami aminokwasowymi oraz w strukturze, w przeciwieństwie do alfa helisy, w której wiązania występują między resztami oraz [1].
Stabilność
Stabilność helisy pi może być niższa, niż helisy alfa, ze względu na trzy główne czynniki: kąty dwuścienne pierwotnie postulowane dla helisy π znajdują się na granicy obszaru stabilności na wykresie Ramachandrana; odległość między łańcuchami znajdującymi się na przeciwległych ścianach helisy wyklucza występowanie stabilizujących oddziaływań van der Waalsa; struktura opiera się na odpowiednim ułożeniu czterech reszt aminokwasów w przestrzeni, by uzyskać stabilizujące wiązanie wodorowe między resztami oraz [1].
Do ok. 2002 roku helisa π była uznawana za niestabilną i rzadką, lecz późniejsze badania wykazały, że nawet 11% białek (104 z 936 białek zawartych w bazie Protein Data Bank) może zawierać fragmenty ustrukturyzowane w helisę π. Te same badania wskazują jednak, że fragmenty te stanowią niewielki odsetek struktury białka, gdyż jedynie 0,3% reszt aminokwasowych tych białek jest zaangażowanych w tworzenie helisy pi[4].
Poniżej wymieniono niektóre przykłady związków zawierających strukturę helisy π:
poli(asparaginian β-fenetylu) w temperaturze powyżej 140 °C – przejście fazowe z helisy α w helisę π zaobserwowane po raz pierwszy w 1982 roku[5],
katalaza wyekstrahowana z grzyba gatunku Penicillium vitale[6] – pierwszy przykład (z 1985) zaobserwowania helisy π w białku[7], ponad 30 lat po pracach teoretycznych postulujących jej istnienie,
bakteryjny homolog transportera Na+ /Cl− -zależnego neuroprzekaźnika – zawiera osiem fragmentów złożonych w helisę π[9].
Znaczenie
Helisa π może powstawać w wyniku mutacji prowadzącej do dodania jednej reszty aminokwasowej do struktury helisy α. Negatywny wpływ destabilizacji struktury jest w związkach występujących w przyrodzie równoważony zyskami funkcjonalnymi białka – badania pokazują, że struktura helisy π występuje częściej w pobliżu miejsc aktywnych w białkach[9].
↑ abM.N.M.N.FodjeM.N.M.N., S.S.Al-KaradaghiS.S., Occurrence, conformational features and amino acid propensities for the π-helix, „Protein Engineering, Design and Selection”, 15 (5), 2002, s. 353–358, DOI: 10.1093/protein/15.5.353(ang.).
↑MasamitsuM.NagaoMasamitsuM. i inni, Side-chain relaxation behavior of racemic mixtures of α-helical polypeptides having phenyl groups at the end of the side chains, „Polymer Bulletin”, 9 (1–3), 1983, DOI: 10.1007/BF00275561(ang.).
↑B.K.B.K.VainshteinB.K.B.K. i inni, Three-dimensional structure of catalase from Penicillium vitale at 2.0 Å resolution, „Journal of Molecular Biology”, 188 (1), 1986, s. 49–61, DOI: 10.1016/0022-2836(86)90479-1(ang.).
↑D.J.D.J.BarlowD.J.D.J., J.M.J.M.ThorntonJ.M.J.M., Helix geometry in proteins, „Journal of Molecular Biology”, 201 (3), 1988, s. 601–619, DOI: 10.1016/0022-2836(88)90641-9(ang.).
↑ToddT.WeaverToddT., LeonardL.BanaszakLeonardL., Crystallographic Studies of the Catalytic and a Second Site in Fumarase C from Escherichia coli, „Biochemistry”, 35 (44), 1996, s. 13955–13965, DOI: 10.1021/bi9614702(ang.).
↑ abRichard B.R.B.CooleyRichard B.R.B., Daniel J.D.J.ArpDaniel J.D.J., P. AndrewP.A.KarplusP. AndrewP.A., Evolutionary Origin of a Secondary Structure: π-Helices as Cryptic but Widespread Insertional Variations of α-Helices That Enhance Protein Functionality, „Journal of Molecular Biology”, 404 (2), 2010, s. 232–246, DOI: 10.1016/j.jmb.2010.09.034, PMID: 20888342, PMCID: PMC2981643(ang.).
Strategi Solo vs Squad di Free Fire: Cara Menang Mudah!