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Classification
Règne	Animalia
Embranchement	Mollusca
Classe	Gastropoda
Ordre	Pulmonata
Sous-ordre	Basommatophora
Super-famille	Lymnaeoidea
Famille	Lymnaeidae
Genre	Lymnaea

Lymnaea stagnalis

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La Grande limnée (Lymnaea stagnalis) ou Limnée stagnale, est un escargot pulmoné d'eau douce qui mesure de 5 à 6 cm. C'est la plus grande espèce de son genre. Comme la quasi-totalité des escargots aquatiques cette espèce est hermaphrodite. Deux individus suffisent à fonder une descendance et c'est un animal très prolifique. Il ne possède pas d'opercule. La coquille d'une limnée morte perd rapidement sa couleur brune. Elle devient rapidement translucide (voir photo).

Biologie

*Lymnaea stagnalis* avec *Physa fontinalis*.

Cette limnée doit périodiquement venir respirer de l'air en surface par une trompe extensible qui communique avec son poumon (pneumostome).

Elle vit à une température de 0 à 25 °C.

Sa grande coquille à 7 ou 8 spires, dextrogyre, fragile, peut se couvrir d'algues qui assurent son camouflage.
Elle peut aussi comme d'autres espèces « ramper » la tête en bas sous la surface de l'eau en étalant un large pied ovale pour se nourrir du biofilm, en montrant ses deux tentacules triangulaires et aplatis.

Parasitoses

Comme tous les gastéropodes aquatiques, cette espèce est souvent porteuse d'une ou plusieurs espèces de microbes et de parasites^[1]^,^[2]^,^[3].

État, pression et menaces pour les populations de Grandes limnées

L'état des populations de cette espèce ne semble pas avoir fait l'objet d'évaluation européenne ou nationales. L'espèce comme tous les invertébrés et vertébrés aquatiques pourraient être vunérable à certaines pesticides ou cocktails de pesticides fréquemment retrouvés dans les eaux douces superficielles^[4]

Utilisations

Facile à élever en microcosmes^[5], en bassins ou aquarium, c'est une espèce modèle utilisée en laboratoire par exemple en neurologie et éthologie^[6] ou encore en écotoxicologie^[7]^,^[8]^,^[9], y compris au stade embryon^[10]. L'espèce a notamment fait l'objet d'études concernant ses moyens de défense contre les microbes^[11]
Archéologie, paléontologie : des débris de coquilles de limnées indiquent la présence ancienne de zones humides^[12]. En 2006, Bobango & al. proposent d'utiliser certaines de ses protéines pour produire de nouveaux insecticides^[13]. Sunada & al (2016)^[14] ont étudié certains effets du stress thermique sur cette espèce (notamment via la méthylation de l'ADN). Forest & al (2016) l'ont utilisé pour étudier sa mémoire de moyen et long terme ^[15].

Aquariophilie : C'est un gastéropode racleur, mangeur d'algues mais aussi de plantes. Il peut être porteur de plusieurs parasites, dont Fasciola hepatica et divers trématodes^[16]. Pour ces raisons il n'est généralement pas introduit dans les aquariums d'eau douce et froide. En outre, dépourvu d'opercule, il peut être victime du reste de la population d'un aquarium si la nourriture vient à manquer.

Ecotoxicologie

Les mollusques aquatiques (qui sont hermaphrodites et pourraient donc répondre différemment que ne le font d'autres groupes d'espèces à certains produits écotoxiques, perturbateurs endocriniens notamment), ont longtemps été oubliés parmi les espèces testées face aux effets (sur la reproduction et la survie notamment) d'expositions prolongées aux produits chimiques.
Lymnaea stagnalis, facile à trouver, à observer et élever en laboratoire (et qui se reproduit souvent) fait partie des espèces finalement choisies pour ce type d'évaluation^[17].

Voir aussi

Références taxonomiques

Sur les autres projets Wikimedia :

Grande limnée, sur Wikimedia Commons
Grande limnée, sur Wikispecies

(en) Référence Catalogue of Life : Lymnaea stagnalis (Linnaeus, 1758) (consulté le 16 décembre 2020)
(fr + en) Référence ITIS : Lymnaea stagnalis (Linnaeus, 1758)
(en) Référence Animal Diversity Web : Lymnaea stagnalis
(en) Référence Fauna Europaea : Lymnaea stagnalis (Linnaeus, 1758) (consulté le 16 mars 2023)
(en) Référence UICN : espèce Lymnaea stagnalis (consulté le 11 février 2021)
(fr) Référence DORIS : espèce Lymnaea stagnalis
(fr) Lymnaea stagnalis en Sologne sur site jpetit.fr
(fr) Référence INPN : Lymnaea stagnalis (TAXREF)

Bibliographie

Czech, P., Weber, K., & Dietrich, D. R. (2001). Effects of endocrine modulating substances on reproduction in the hermaphroditic snail Lymnaea stagnalis L. | Aquatic Toxicology, 53(2), 103-114.|URL:http://kops.uni-konstanz.de/bitstream/handle/123456789/6977/Effects_of_endocrine_modulating_substances_on_reproduction_in_the_hermaphroditic_snail_Lymnaea_stagnalis_L.pdf?sequence=1&isAllowed=y]
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Geraerts, W. P. M. (1976). Control of growth by the neurosecretory hormone of the light green cells in the freshwater snail Lymnaea stagnalis. General and comparative endocrinology, 29(1), 61-71 | résumé.
Joosse, J. (1964). Dorsal bodies and dorsal neurosecretory cells of the cerebral ganglia of Lymnaea stagnalis L. Archives neerlandaises de Zoologie, 16(1), 1-103.
Malekzadeh-Viayeh, R., Imani Baran, A., & Yakhchali, M. (2016). Molecular detection of the infection with Fasciola hepatica in field-collected snails of Galba truncatula and Lymnaea stagnalis from West Azarbaijan, Iran. Archives of Razi Institute, 70(3), 195-202.
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Yonezawa, M., Sakuda, S., Yoshimura, E., & Suzuki, M. (2016). Molecular cloning and functional analysis of chitinases in the fresh water snail, Lymnaea stagnalis. Journal of structural biology (résumé).

Notes et références

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↑ Dreyfuss, G., Vignoles, P., & Rondelaud, D. (2016). Pseudosuccinea columella: experimental co-infections of juvenile and pre-adult snails with the digeneans Calicophoron daubneyi and Fasciola hepatica. Journal of helminthology, 1-7.
↑ Soldánová, M., Selbach, C., & Sures, B. (2016). The early worm catches the bird? Productivity and patterns of Trichobilharzia szidati cercarial emission from Lymnaea stagnalis. PloS one, 11(2), e0149678.
↑ Tufi, S., Wassenaar, P. N., Osorio, V., De Boer, J., Leonards, P. E., & Lamoree, M. H. (2016). Pesticide Mixture Toxicity in Surface Water Extracts in Snails (Lymnaea stagnalis) by an in Vitro Acetylcholinesterase Inhibition Assay and Metabolomics. Environmental science & technology, 50(7), 3937-3944.
↑ Van de Perre, D., Roessink, I., Janssen, C. R., Smolders, E., Van Regenmortel, T., Van Wichelen, J., ... & De Schamphelaere, K. A. (2016). The effects of zinc on the structure and functioning of a freshwater community: A microcosm experiment. Environmental Toxicology and Chemistry (résumé).
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↑ Besser, J. M., Dorman, R. A., Hardesty, D. L., & Ingersoll, C. G. (2016). Survival and Growth of Freshwater Pulmonate and Nonpulmonate Snails in 28-Day Exposures to Copper, Ammonia, and Pentachlorophenol. Archives of environmental contamination and toxicology, 70(2), 321-331 (résumé).
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↑ Sunada, H., Riaz, H., de Freitas, E., Lukowiak, K., Swinton, C., Swinton, E., ... & Lukowiak, K. (2016). Heat stress enhances LTM formation in Lymnaea : role of HSPs and DNA methylation. Journal of Experimental Biology, 219(9), 1337-1345
↑ Forest, J., Sunada, H., Dodd, S., & Lukowiak, K. (2016) Training Lymnaea in the presence of a predator scent results in a long-lasting ability to form enhanced long-term memory. Journal of Comparative Physiology A, 202(6), 399-409< (résumé)
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↑ Essai n° 243: Essai de reproduction chez Lymnaea stagnalis? OCDE |DOI:https://dx.doi.org/10.1787/9789264264342-fr